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細(xì)胞凍存與復(fù)蘇操作步驟與注意事項(xiàng)
  • 發(fā)布日期:2020-04-07      瀏覽次數(shù):1820
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      細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來,這樣在需要的時(shí)候再復(fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。而且適度地保存一定量的細(xì)胞,可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種,起到了細(xì)胞保種的作用。 

      一、原理

      在不加任何條件下直接凍存細(xì)胞時(shí),細(xì)胞內(nèi)和外環(huán)境中的水都會形成冰晶,能導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)發(fā)生機(jī)械損傷、電解質(zhì)升高、滲透壓改變、脫水、PH改變、蛋白變性等,能引起細(xì)胞死亡。如向培養(yǎng)液加入保護(hù)劑,可使冰點(diǎn)降低。在緩慢的凍結(jié)條件下,能使細(xì)胞內(nèi)水份在凍結(jié)前透出細(xì)胞。貯存在-130℃以下的低溫中能減少冰晶的形成。
      細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)速度要快,使之迅速通過細(xì)胞易受損的-5~0℃,細(xì)胞仍能生長,活力受損不大。

      目前常用的保護(hù)劑為二甲亞砜(DMSO)和甘油,它們對細(xì)胞無毒性,分子量小,溶解度大,易穿透細(xì)胞。

      二、細(xì)胞凍存與復(fù)蘇操作步驟

      (一)凍存 

      1、消化細(xì)胞(同實(shí)驗(yàn)二),將細(xì)胞懸液收集至離心管中。
      2、1000rpm離心10分鐘,棄上清液。
      3、沉淀加含保護(hù)液的培養(yǎng),計(jì)數(shù),調(diào)整至5×106/ml左右。
      4、將懸液分至凍存管中,每管1 ml。
      5、將凍存管口封嚴(yán)。如用安瓿瓶則火焰封口,封口一定要嚴(yán),否則復(fù)蘇時(shí)易出現(xiàn)爆裂。
      6、貼上標(biāo)簽,寫明細(xì)胞種類,凍存日期。凍存管外拴一金屬重物和一細(xì)繩。
      7、按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→低溫冰箱(-30℃ 1小時(shí))→氣態(tài)氮(30分鐘)→液氮。
      注意:操作時(shí)應(yīng)小心,以免液氮凍傷。液氮定期檢查,隨時(shí)補(bǔ)充,不能揮發(fā)干凈,一般30立升的液氮能用1~1.5月。

      (二)復(fù)蘇 

      1.  細(xì)胞實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行常規(guī)消毒,紫外照射40min以上。
      2.  培養(yǎng)液(DMEM)、0.25%胰蛋白酶(Trypsin)恒溫水浴箱37°C預(yù)熱20min,備用。
      3.  二甲基亞砜(DMSO)在40°C冰箱中冷藏30min,備用。
      4.  從液氮保存罐中取出凍存管,立即放入400°C水浴中,快速搖晃,直至凍存液*融化。
      5.  將細(xì)胞懸液移入15ml離心管,緩慢加入4ml培養(yǎng)液,離心(1000r/min,5min)。
      6.  用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度,方培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
      7.  記錄復(fù)蘇日期。
       
      三、注意事項(xiàng)

      1.  取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。此項(xiàng)尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時(shí)凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸。

      2.  凍存液的問題:凍存液的配置已是常識,在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對細(xì)胞不是*無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對細(xì)胞的毒副作 較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液*融化。如果復(fù)蘇溫度太慢,會造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)選擇進(jìn)口產(chǎn)品。

      3.  離心前須加入少量培養(yǎng)液。細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對細(xì)胞的損傷。

      4.  離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液。因?yàn)殡x心的目的是兩個,去除 DMSO,去除死細(xì)胞,這個是標(biāo)準(zhǔn)流程,但對一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時(shí)間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會受壓過大, 死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細(xì)胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液 體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗(yàn)中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇,結(jié)果無有異常。

      5.  細(xì)胞貼壁少的問題:教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml-15m培養(yǎng)液,而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。

      6.  復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題:試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過多,細(xì)胞濃度過低,不利于細(xì)胞的貼壁。

      7.  加培養(yǎng)基的量放入問題:這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果你加培養(yǎng)基的太少,那么DMSO的濃度就會比較大,就會影響 細(xì)胞生長,從以前的資料來看,DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響,還有一個說法是1%。所以如果你的凍存液的濃度是 10%DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。